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植物样本直接PCR Mix图片
产品货号:
JN5114
中文名称:
植物样本直接PCR Mix
英文名称:
2×DirectPlant PCR MasterMix
产品规格:
50T|200T
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

本制品是一款专门用于植物样本直接扩增的PCR Mix,包含独特的裂解缓冲液,适用于植物组织直扩、植物品种鉴定(SSR)、植物转基因检测。本制品无需预先纯化DNA,仅需使用直径约1mm的植物组织(包括新鲜、冷藏或冷冻样本)经裂解缓冲液快速处理后,所得粗裂解液即可直接作为PCR模板。PCR Mix包含定向改造的DNA聚合酶,对植物源PCR抑制物具有较强的耐受性,兼容26%~82% GC含量片段扩增。为2×预混液形式,操作时仅需加入引物与模板,简单快速,提高了检测通量与结果重现性。PCR产物3'端“A”突出,可直接用于T/A克隆载体连接,适用于植物品种鉴定、转基因检测及其他分子标记辅助选择等。




  • 耐受性强:对植物中的PCR抑制物具有较强的耐受性,适用常见植物叶片及种子直接扩增。
  • 快速高效:1kb以内片段,延伸速度快至1s/kb;2kb以内5s/kb,4kb以内15s/kb。
  • 兼容性强:GC含量26%~82%。
  • 稳定性高:37℃放置14天,性能不变。



组分50T200T
2×DirectPlant PCR MasterMix1.25mL1.25mL×4
Plant Direct Lysis Buffer5mL20mL

保存:-20℃,有效期1年。


  • 直扩PCR Mix和裂解缓冲液需完全溶解后使用,防止离子浓度不均匀。
  • 应根据实验目的选择合适的循环数,循环数过少,会造成扩增量不足。循环数过多,扩增量增加,但突变率会增加,并造成非特异性扩增。
  • 根据引物Tm值设置合适的退火温度,退火温度过低,会造成非特性扩增。退火温度过高,可能扩增不到目的条带。
  • 对于植物粗品扩增或直扩,建议实验开始前以纯化的基因组DNA作为阳性对照,确保体系、引物及操作无误。
  • 建议在所有直接PCR检测中使用无模板对照以监控污染。



  • 样品处理:
    • 植物叶片:
      • 直接法:推荐使用幼嫩叶片(为了获得小且统一的样品,推荐使用固定直径0.5~3mm的打孔器打取样本),从植物上取一个0.35~5mm大小的圆片,并将圆片直接放入PCR反应液(50μL)中(确保叶片浸没在液体中)。对于长片段或使用直接方案的困难样品,较小的约0.35mm大小的样品可能会得到更稳健的结果。
      • 裂解法:推荐使用幼嫩叶片。从植物上取一个0.5mm~3mm大小的圆片,放入20μL植物裂解液中。用移液器吸头通过轻压管壁将叶片样品切碎。如果使用更大量的叶片组织(总量不超过1mg),则将稀释缓冲液体积增加到50μL。压碎叶片后,溶液应呈绿色。离心沉淀植物材料,将裂解液用水稀释5倍后取1μL上清液作为50μL PCR反应的模板。所需上清液体积可因所用植物材料和稀释体积而异。
    • 植物种子:
      • 直接法:使用干净的手术刀,去除种皮并切下一小块种子样品(直径0.5mm~3mm)。将样品直接放入PCR反应液(50μL体积)中(确保种子浸没在液体中)。建议使用去壳的种子。对于非常小的种子(如拟南芥),使用1-2粒完整种子直接放入PCR反应液中。
      • 裂解法:使用手术刀切下一小块去壳种子样品(直径0.5mm~3mm)并直接放入20μL稀释缓冲液中(确保种子样品被稀释缓冲液覆盖),用移液器吸头通过轻压管壁将样品切碎,并在室温下孵育3min。简短离心,将裂解液用水稀释5倍后取1μL上清液作为50μL PCR反应的模板。
  • 常用反应体系:
    成分用量终浓度
    2×DirectPlant PCR MasterMix25μL
    上游引物(10μM)2.5μL0.5μM
    下游引物(10μM)2.5μL0.5μM
    模板0.5~3mm植物组织/1μL植物组织裂解稀释液-
    ddH2O至50μL-
    • 引物终浓度建议在0.2~1.0μM之间,特殊样本需探索引物投入量。
  • 推荐PCR反应程序:
    步骤温度时间循环数
    预变性94℃5min1
    变性94℃40sec35
    退火50~60℃35sec
    延伸72℃1~15s/kb
    终延伸72℃10min1
    • 大多数片段引物退火温度建议为60℃;也可以根据引物Tm值±3℃的温度作为退火温度;
    • 片段≤1kb,延伸速度1s/kb;片段≤2kb,延伸速度5s/kb;片段≤4kb,延伸速度15s/kb。



  • 无产物或产量低
    • 如果使用您自己引物对纯化后DNA扩增无条带:
      • 优化退火温度。
      • 确保循环程序按推荐执行。
      • 检查引物设计。
    • 如果使用您自己引物对纯化后DNA扩增有条带,但直接扩增无产物:
      • 使用更小的样品(例如0.35mm打孔片)。
      • 增加循环数。
      • 对于大或困难样品及长DNA片段的扩增,使用A.3方案。
    • 如果使用您自己引物对纯化后DNA扩增有条带,但直接扩增无产物:
      • 将上清液用H2O稀释1:10或1:100,并在PCR中使用1μL作为模板。
      • 尝试压碎和不压碎样品两种方法。
      • 将样品在稀释缓冲液中室温孵育3min。
      • 使用更小的样品量或增加稀释缓冲液的体积。
  • 非特异性产物-高分子量拖尾
    • 确保使用的延伸时间不过长;
    • 减少总循环数;
    • 提高退火温度或进行温度梯度PCR;
    • 降低引物浓度。
  • 非特异性产物-低分子量离散条带
    • 提高退火温度或进行温度梯度PCR;
    • 缩短延伸时间;
    • 降低引物浓度;
    • 减少总循环数;
    • 设计新引物。

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